ინფორმაცია

მიკროსკოპის პარამეტრები მთლიანი სისხლის ალალიზისთვის


მაინტერესებს, როგორია სისხლის უჯრედების ანალიზის მიკროსკოპის მინიმალური მოთხოვნები. მე მაინტერესებს: -ერითროციტების აღრიცხვა -ლეიკოციტების ყველა ტიპის გამოთვლა და განსხვავება -თრომბოციტების აღრიცხვა

  • რა არის მიზნის მინიმალური გადიდება?
  • რომელი ტიპის მიზანი არის საკმარისი?
  • როგორია ასეთი მიზნის მინიმალური ფასის კლასი?

როგორც აღმოვაჩინე სამედიცინო ლაბორატორიულ ჯგუფებში, ლაბორატორიის მუშაკები უმეტესად იყენებენ 100x Objective- ს (ზეთს ან მშრალ Leica- ს ობიექტებს) და 10x თვალის. შედეგად მიიღება 1000x და ქვემოთ მოყვანილი სურათები.

ჩემი იდეა იყო 20x ობიექტივის გამოყენება (რადგან მისი მართვა ბევრად უფრო ადვილია) და 14 მეგაპიქსელიანი კამერა. მაშინ ერითროციტს უნდა ჰქონდეს გარჩევადობა დაახლოებით 60x60 პიქსელი, რაც საკმარისი უნდა იყოს დიფერენციაციისათვის.


მთლიანი სისხლის ტრანსკრიპტომის ანალიზი ცხადყოფს შიზოფრენიაში მიკრობული მრავალფეროვნების გაზრდას

ადამიანის მიკრობიომის როლი ჯანმრთელობასა და დაავადებებში სულ უფრო მეტად ფასდება. ჩვენ შევისწავლეთ 192 ადამიანის სისხლში არსებული მიკრობული საზოგადოებების შემადგენლობა, მათ შორის ჯანსაღი კონტროლი და პაციენტები, რომლებსაც აქვთ ტვინის სამი დარღვევა: შიზოფრენია, ამიოტროფიული გვერდითი სკლეროზი და ბიპოლარული აშლილობა. მაღალი ხარისხის რუქის რნმ-ის თანმიმდევრობის წაკითხვისას, როგორც კანდიდატური მიკრობული წაკითხვისას, ჩვენ შევასრულეთ მთელ სისხლში გამოვლენილი მიკრობული ტრანსკრიპტების პროფილირება. ჩვენ შევძელით სისხლში ბაქტერიული და არქეალური ფილას ფართო სპექტრის აღმოჩენა. საინტერესოა, რომ ჩვენ შევამჩნიეთ გაზრდილი მიკრობული მრავალფეროვნება შიზოფრენიით დაავადებულ პაციენტებში სამ სხვა ჯგუფთან შედარებით. ჩვენ გავიმეორეთ ეს დასკვნა შიზოფრენიის შემთხვევების კონტროლის დამოუკიდებელ ჯგუფში. ეს გაზრდილი მრავალფეროვნება საპირისპირო კორელაციაშია CD8 + მეხსიერების T უჯრედების სუბპოპულაციის უჯრედების სიჭარბესთან ჯანსაღ კონტროლში, რაც ხელს უწყობს სისხლში აღმოჩენილ მიკრობულ პროდუქტებს, იმუნიტეტსა და შიზოფრენიას შორის კავშირს.


ფონი

მიგრაციული ჩრდილოეთის შოველერი (Anas clypeata) და ევრაზიული ჩაი (ანას კრეკა) არის ორი გავრცელებული და გავრცელებული მტკნარი წყლის იხვი. ისინი მრავლდებიან ევროპისა და აზიის ჩრდილოეთ რეგიონებში (Clements, 2007) და ზამთრობენ სამხრეთ ევროპასა და აფრიკაში. ორივე სახეობა მიეკუთვნება იმ სახეობებს, რომლებზეც ვრცელდება შეთანხმება აფრიკა-ევრაზიის გადამფრენი წყლის ფრინველების (AEWA) დაცვის შესახებ.

გადამფრენი წყლის ფრინველები კლასიფიცირდება როგორც "გადაშენების საფრთხის წინაშე" და მისი ძირითადი საფრთხეები მიგრაციის დროს მოიცავს ადამიანთა შეშფოთებას, მათ შორის ნადირობას, ჭარბტენიან ადგილებში მათი ზამთრის ჰაბიტატის დაკარგვას და დეგრადაციას (Amat & amp Green, 2010 Máñez et al., 2010). ). ჯერჯერობით, არ ჩატარებულა კვლევა მიგრაციის სეზონზე ამ სახეობების ჰემატოლოგიური და ბიოქიმიური მდგომარეობის შესაფასებლად, თუმცა ჰემატოლოგიური და ბიოქიმიური პარამეტრების განსაზღვრა იძლევა ეფექტურ მეთოდს თავისუფლად მცხოვრებ ფრინველებში სხეულის მდგომარეობის შესაფასებლად. როგორც ჰემატოლოგიური, ასევე ბიოქიმიური პარამეტრები მეტაბოლური მდგომარეობის კარგი მაჩვენებლებია და გავლენას ახდენს სხვადასხვა სეზონური პროცესები, რომლებიც დაკავშირებულია დნობასთან, გამრავლებასთან და მიგრაციასთან, ასევე ყოველდღიური რყევებით ცირკადული რიტმის გამო (Jenni-Eiermann et al., 2002). უფრო მეტიც, ამ ტიპის კვლევებმა შეიძლება უზრუნველყოს მტკიცებულება იმისა, რომ ყოველწლიური ციკლის განმავლობაში ზოგიერთი ფიზიოლოგიური პასუხი შეიძლება იყოს სპეციფიკური სახეობებისთვის (Cooke et al., 2013). ფრინველების ჯანმრთელობის მდგომარეობა შეიძლება დაგეხმაროთ შესაძლო პათოლოგიების გამოვლენაში (Cafarchia et al., 2006 Galkina, L'vov, Gromashevskiĭ, & amp Moskvina, 2004), იმუნოლოგიური სტატუსის მონიტორინგი (L'vov et al., 2007) და სრული პარაზიტოლოგიური კვლევები (Plutzer & amp Tomor, 2009).

მიგრაციის დროს ფრინველები ექვემდებარებიან სხვადასხვა სტრესულ სიტუაციებს, როგორიცაა მაღალი მეტაბოლური მოთხოვნილებები, ფიზიკური აქტივობა, საკვების ხარისხი და რაოდენობა ან გარემოს დამაბინძურებლები, რომლებსაც შეუძლიათ გამოიწვიონ სისხლის პარამეტრების ცვლილებები (Sturkie & amp Griminger, 1986 Vleck & amp Vleck, 2002) რამაც შეიძლება გამოიწვიოს მიგრაციული და მეცხოველეობის შეზღუდვების მიმართ (Studds & amp Marra, 2005).

მიუხედავად იმისა, რომ ფრინველთა მჭიდროდ დაკავშირებული სახეობების ჰემატოლოგიისა და სისხლის ბიოქიმიის შესწავლას აქვს შედარებით ფიზიოლოგიური მნიშვნელობა (Gee, Carpenter, & amp Hensler, 1981), ეს კვლევები მწირია და ძირითადად ფოკუსირებულია სხვადასხვა ტაქსონის ფრინველებზე. ფიზიოლოგიური კვლევები ველურ ბუნებაზე აღმოჩნდა შესაბამისი (Jabbour, Hayssen, & amp Bruford, 1997 Seiser et al., 2000). ამ მიზეზით, გამოითქვა მოსაზრება, რომ გარეული ცხოველების ფიზიოლოგიური ეკოლოგია უნდა იყოს ჩართული გადაშენების საფრთხის წინაშე მყოფი მოსახლეობის კონსერვაციის პოლიტიკასა და მონიტორინგის პროგრამებში (Carey, 2005 Seiser et al., 2000). თუმცა, მოკლევადიანი გეგმა, რომლის მიზანია შეაფასოს და გამოიძიოს მოულოდნელი გარემო მოვლენები, როგორიცაა ცხოველების სიკვდილი, იშვიათად ითხოვს დაუყოვნებლივ ეკოფიზიოლოგიურ კვლევებს. ისინი ხელს უწყობენ სისხლის მახასიათებლების ცვალებადობის უკეთ გააზრებას ისეთ ფაქტორებთან მიმართებაში, როგორიცაა ფილოგენეტიკური მდებარეობა, ეკოლოგიური ჰაბიტატი, საკვების შერჩევა და ცხოვრების წესი.

ეს კვლევა არის ჰემატოლოგიური და პლაზმური ბიოქიმიური პარამეტრების შედარებითი ანალიზი მიგრირებად ჩრდილოეთ შოველერსა და ევრაზიულ ჩაის ზამთარში ჩრდილოეთ ეგვიპტეში. ჩვენი ინფორმაციით, ეს არის პირველი კვლევა, რომელიც ეხება ორივე სახეობის ჰემატოლოგიურ და ბიოქიმიურ პარამეტრებს გამოზამთრების ეტაპზე. ამ კვლევის მიზანი იყო ჰემატოლოგიისა და სისხლის ბიოქიმიის ზოგიერთი ძირითადი პარამეტრის რაოდენობრივი და შედარება და მიგრაციის თვალსაზრისით ორივე სახეობის ნორმალური ფიზიოლოგიური პარამეტრების საცნობარო მნიშვნელობების უზრუნველყოფა.


სისხლის მთლიანი სლაიდების უჯრედის მიკროსკოპული სურათების სემანტიკური სეგმენტირების ძლიერი მეთოდი

სისხლის უჯრედების გამოსახულების SEM (სკანირების ელექტრონული მიკროსკოპი) სეგმენტაციაზე წინა ნამუშევრები იგნორირებას უკეთებს სისხლის უჯრედების სეგმენტირების სემანტიკური სეგმენტაციის მიდგომას. შემოთავაზებულ ნაშრომში ჩვენ განვიხილავთ სისხლის უჯრედების სეგმენტირების მთლიანი პრობლემის სემანტიკური სეგმენტაციის მიდგომის გამოყენებით. ჩვენ ვქმნით ახალ კონვოლუციურ კოდირ-დეკოდერის ჩარჩოს, VGG-16– თან ერთად, როგორც პიქსელის დონის ფუნქციის მოპოვების მოდელს. შემოთავაზებული ჩარჩო მოიცავს 3 ძირითად ნაბიჯს: პირველი, ყველა ორიგინალური გამოსახულება, ხელით გენერირებული სიმართლის ნიღბებით, თითოეული სისხლის უჯრედის ტიპისათვის გაივლის წინასწარი დამუშავების სტადიას. წინასწარი დამუშავების ეტაპზე ხორციელდება პიქსელის დონის მარკირება, RGB- ში ნაცრისფერი მასშტაბით გადაცმული ნიღბიანი გამოსახულების და პიქსელის შერწყმა და ერთიანობის ნიღბის წარმოქმნა. ამის შემდეგ, VGG16 იტვირთება სისტემაში, რომელიც მოქმედებს როგორც პიქსელის დონის წინასწარი მომზადებული ფუნქციის მოპოვების მოდელი. მესამე ეტაპზე ტრენინგის პროცესი იწყება შემოთავაზებულ მოდელზე. ჩვენ შევაფასეთ ჩვენი ქსელის მოქმედება სამი შეფასების მეტრიკაზე. ჩვენ მივიღეთ შესანიშნავი შედეგები როგორც კლასობრივი, ასევე გლობალური და საშუალო სიზუსტის თვალსაზრისით. ჩვენმა სისტემამ მიაღწია კლასობრივ სიზუსტეს 97.45%, 93.34%და 85.11%სისხლის წითელი უჯრედების, WBC და თრომბოციტებისათვის, შესაბამისად, ხოლო გლობალური და საშუალო სიზუსტე რჩება 97.18%და 91.96%, შესაბამისად.

1. შესავალი

სისხლი არის ყველაზე დელოკალიზებული სითხე ორგანიზმში, რომელიც ჟანგბადით მდიდარ სისხლს სასუნთქი სისტემისგან სხეულის სხვა ნაწილებში ატარებს და ნახშირორჟანგი უკან გადააქვს [1]. ის ასევე ეხმარება ნარჩენების გამოდევნას თირკმელებით და ატარებს საკვებ ნივთიერებებს საჭმლის მომნელებელი სისტემიდან სხეულის სხვა ქსოვილებში [2]. ადამიანის სისხლი შედგება სისხლის წითელი უჯრედებისგან (ერითროციტები, ერითროციტები), სისხლის თეთრი უჯრედები (სისხლის თეთრი უჯრედები, ლეიკოციტები) და თრომბოციტები 40% სისხლის წითელი უჯრედების და 60% სისხლის წითელი უჯრედების და თრომბოციტებისგან. ერითროციტებისა და სისხლის წითელი უჯრედების ზუსტი სეგმენტირება და კლასიფიკაცია სასიცოცხლო როლს ასრულებს სისხლში დაკავშირებული დაავადებების იდენტიფიკაციაში, როგორიცაა სისხლის კიბო, სინდრომი, ლეიკემია, ანემია, შიდსი და მალარია. სისხლის უჯრედების კლასიფიკაციისა და სეგმენტაციის შესახებ ძირითადი განსაზღვრება არის სისხლის შემადგენლობის სწორი იდენტიფიკაცია და მიკროსკოპული გამოსახულებიდან სასარგებლო ინფორმაციის მოპოვება. სისხლის ანალიზი შეიძლება გაკეთდეს ხელით დათვლის მეთოდებით ან მანქანით დაფუძნებული მეთოდებით. მექანიკური დათვლის მეთოდები ძალიან დამღლელია, გრძელია, ექვემდებარება შეცდომებს და მიდრეკილია ჰემატოლოგის ექსპერტიზის მიმართ. ეს სისხლის უჯრედების სურათის ავტომატურ ანალიზს აუცილებელს ხდის სისხლის დაკავშირებული დარღვევების სწორი და ეფექტური იდენტიფიკაციისათვის. ამჟამად, რამდენიმე ფერის სივრცის ტექნიკა გამოიყენება მიკროსკოპული სურათების დაყოფისათვის, როგორიცაა RGB, HIS და LAB, მაგრამ RGB არის ყველაზე ხშირად გამოყენებული ფერადი სივრცის ტექნიკა ადამიანის ვიზუალურ სისტემასთან მისი მჭიდრო კავშირის გამო [3]. წინა ნამუშევრების უმეტესობა მიზნად ისახავს ერთი უჯრედის სეგმენტაციას [4-7]. ერთუჯრედიანი ტექნიკა მიზნად ისახავს უჯრედების მხოლოდ ერთ ტიპს (WBC ან RBC) ერთდროულად სეგმენტაციისთვის. მაგრამ, არცერთი წინა ტექნიკა არ იყენებდა სისხლის სამივე ტიპის უჯრედების მთლიანი სლაიდების სეგმენტირებას ერთდროულად. სემანტიკური სეგმენტაცია პოპულარული გახდა სურათებში ობიექტების მკვრივი პიქსელის პროგნოზირებისთვის სრულად კონვოლუციური ქსელების (FCN) გამოყენებით [8, 9]. ეს ქსელები ღრმად არის შეღწეული ინტერესის პიქსელის ბაზის (ROI) გამოვლენის, კლასიფიკაციისა და პროგნოზირების მიზნით. კონვოლუციური ნერვული ქსელები არა მხოლოდ აუმჯობესებს ინტერესის ადგილობრივ რეგიონს [10, 11], არამედ უზარმაზარ პროგრესს იძლევა მთლიანი გამოსახულების სეგმენტაციაში. სემანტიკური სეგმენტაცია გვიჩვენებს მემკვიდრეობის ქცევას [11] ROI ადგილმდებარეობასა და სემანტიკას შორის. სემანტიკური სეგმენტაცია ეხება რა (სემანტიკა) და სად (ადგილმდებარეობას) კითხვებს შეყვანის სურათში. სემანტიკა და ადგილმდებარეობის ინფორმაცია დაშიფრულია არაწრფივი ლოკალურ-გლობალურ პირამიდაში ღრმა მახასიათებლების მოპოვების გზით. ჩვენ ყურადღებას ვაქცევთ WBC- ების, ერითროციტებისა და თრომბოციტების სეგმენტაციას უჯრედის მთლიანი სლაიდური გამოსახულების ფარგლებში სემანტიკური სეგმენტაციის ტექნიკის გამოყენებით.

ამ ნაშრომში ჩვენ ვაპირებთ შემოვიღოთ ახალი ალგორითმი მთლიანი სლაიდური RBC, WBC და თრომბოციტების გამოსახულების სემანტიკური სეგმენტაციისთვის, უახლესი ნიღბებით დაფუძნებული ხელით შემუშავებული სისხლის უჯრედების მონაცემთა ნაკრების შემუშავებით. -IDB [12] როგორც სემანტიკური სეგმენტაციის დადასტურების სტანდარტი. სემანტიკური სეგმენტაციის ძირითადი მოტივაცია იმაში მდგომარეობს, რომ მას შეუძლია უცნობი გამოსახულების სეგმენტირება სხვადასხვა ნაწილად ან ობიექტად. ამ სამუშაოს ძირითადი წვლილი შემდეგია: (1) ძლიერი ალგორითმი მთლიანი სლაიდების WBC, RBC და თრომბოციტების უჯრედების ზუსტი და ეფექტური სეგმენტაციისათვის სემანტიკური სეგმენტაციის საფუძველზე. (2) ხელით გენერირებული ნიღბებზე დაფუძნებული სისხლის უჯრედების მონაცემთა ნაკრების განვითარება ALL-IDB– დან. ეს მონაცემთა ნაკრები შეიცავს თითოეული ტიპის სისხლის უჯრედების ინდივიდუალურ ნიღაბს, ანუ WBCs, RBCs და თრომბოციტებს, სლაიდების გამოსახულების ნიღბთან ერთად. Pixelwise მარკირება ხორციელდება თითოეული ტიპის სისხლის უჯრედის ნიღბზე. (3) ტექნიკა, რომელიც პროგნოზირებს მთლიანი სლაიდების გამოსახულების WBC, RBC და თრომბოციტების პიქსელის ფუძის თანაფარდობას. ეს ტექნიკა მნიშვნელოვან როლს ასრულებს სხვადასხვა სახის დაავადებების დიაგნოზის დროს სისხლის ზუსტ და ეფექტურ დათვლაში.

დანარჩენი ნაშრომი ორგანიზებულია შემდეგნაირად: ნაწილი 2 აღწერს უახლეს წინა ნამუშევრებს, ნაწილი 3 აღწერს მიმდინარე სამუშაოსთვის გამოყენებულ მიდგომას, ხოლო მონაცემების შეგროვება/მომზადება, ექსპერიმენტული მუშაობა, შედეგები და დასკვნა შესაბამისად 4-7 განყოფილებებში.

2. დაკავშირებული სამუშაო

სისხლის უჯრედებზე წინა სამუშაოები, როგორიცაა სისხლის თეთრი უჯრედები (სისხლის თეთრი უჯრედები) და სისხლის წითელი უჯრედები (სისხლის წითელი უჯრედები) [4-7] გამოიყენა K- საშუალებები, ზაკის ალგორითმი, გრადიენტის სიდიდე, წყალგამყოფი ტრანსფორმაცია და SVM სეგმენტირებისთვის, ასევე წინასწარი დამუშავება გამოსახულების გასაუმჯობესებლად. [13]. ეს ნამუშევრები აჩვენებს გამორჩეულ ფუნქციებს სისხლის უჯრედების ეფექტური გამოვლენისა და სეგმენტაციისთვის. მაგრამ ნამუშევრების უმეტესობა განიხილავს გამოსახულების ერთი უჯრედის მკურნალობას (WBCs ან RBCs). [14, 15] -ში Quiñones et al. და შაჰინი და სხვები. შეიმუშავა ალგორითმი ლეიკოციტების (WBC) დათვლისა და სეგმენტაციისათვის, შესაბამისად HSV ფერის სივრცის/ზაკის ალგორითმის და ადაპტირებული ნეიტროზოფიული მსგავსების ქულის/ოცუს ზღურბლის გამოყენებით. [15] -ში BS_DB3 და ALL_DB1 და ALL_DB2 [12] მონაცემთა ნაკრები სეგმენტაციის მიზნით იქნა გამოყენებული, ხოლო Quiñoneset ალ. [14] სულ 12 სისხლის ნაცხის გამოსახულება გამოიყენა გამოსახულების სისხლის ტიპის სპეციფიკური ტიპის უჯრედების დასათვლელად. ლიუ და სხვები [16] შეასრულა სისხლის თეთრი უჯრედების სეგმენტაცია საშუალო ცვლის კლასტერული და წყალგამყოფი ოპერაციის გამოყენებით 306 სურათზე, რომელიც შეგროვდა შანდონგის უნივერსიტეტის საავადმყოფოდან. ყველა მათგანმა ჩაატარა ანალიზი ერთი ტიპის სისხლის უჯრედებზე. არავინ განიხილავს სისხლის უჯრედების გამოსახულების სეგმენტირებას WBC, RBC და თრომბოციტებად. მიაომ და სიაომ [5] ჩაატარეს სეგმენტირება WBC და RBC უჯრედების მოჭრილ უჯრედებზე ერთდროულად არა მთლიანი სლაიდების გამოსახულებაზე 97.2% და 94.8% სიზუსტით, მაგრამ მათ უგულებელყვეს თრომბოციტები და ასევე უარყოფითად შეასრულეს დაბალი ხარისხის სურათები. მათი ალგორითმი გვიჩვენებს, რომ სისხლის წითელი უჯრედების დაქვეითებისა და გადაჭარბებული განაკვეთები არის 1% და 3%, შესაბამისად, რაც საკმაოდ მაღალია მონაცემთა ნაკრების მხოლოდ 100 სურათში. ჩენი და სხვები [17] შეიმუშავა ჩარჩო სინერგიული გამოსახულების და მახასიათებლების მიღებისათვის, რომელიც ემყარება ჯვარედინი მოდალობის მიღებას CT და MR სურათების სეგმენტაციისათვის. შემოთავაზებული მოდელი აღადგენს შესრულების დეგრადაციას 17.2% და 73.0% შორის. ლიუ და სხვები [16] შეასრულა სისხლის თეთრი უჯრედების სეგმენტაცია საშუალო ცვლის კლასტერული და წყალგამყოფი ოპერაციის გამოყენებით 306 გამოსახულებაზე, რომელიც შეგროვდა შანდონგის უნივერსიტეტის საავადმყოფოდან. შირაზი და სხვები. [6] შემოგვთავაზა ჰიბრიდული ტექნიკა გველის ალგორითმისა და გრამ – შმიდტის ორთოგონალიზაციით [18] WBC– ს სეგმენტაციისთვის. მათ ჩაატარეს წინასწარი დამუშავება შეყვანის სურათზე მრუდი ტრანსფორმაციით Wiener ფილტრის საშუალებით გამოსახულების გასაუმჯობესებლად უკეთესი შედეგისთვის. ყველა ანალიზი დაფუძნებულია ერთ უჯრედზე. კაო და სხვები [19] გამოიყენა 203 ხელით დახატული სურათი და 70853 სურათი ვუჰანის უნივერსიტეტის ჟონგნანის საავადმყოფოდან ლეიკოციტების სეგმენტაციისათვის. მათ გამოიყენეს SWAM & ampIVFS და ბუნდოვანი განსხვავება დაფუძნებული ალგორითმები და მიიღეს მხოლოდ WBC– ების სეგმენტაციის სიზუსტე 93.75%. სისხლის თეთრი უჯრედების დათვლა ჩატარდა [20] ALL-IDB1– ზე, 2 მონაცემთა ნაკრები SVM [21] და NNS (უახლოესი მეზობლების ძებნა) ევკლიდური მანძილის გამოყენებით. ეს ტექნიკა აჭარბებს მხოლოდ ერითროციტულ სისხლის უჯრედებს არა სისხლის წითელი უჯრედების და თრომბოციტებისათვის. [14, 15] -ში Quiñones et al. და შაჰინი და სხვები. შეიმუშავა ალგორითმი ლეიკოციტების (WBC) დათვლისა და სეგმენტაციისათვის, შესაბამისად HSV ფერის სივრცის/ზაკის ალგორითმის და ადაპტირებული ნეიტროზოფიული მსგავსების ქულის/ოცუს ზღურბლის გამოყენებით. იი და სხვები [22] სეგმენტირებული მხოლოდ სისხლის წითელი უჯრედები მარკერით კონტროლირებადი წყალგამყოფი წყლების გარდაქმნის ალგორითმის დახმარებით ხელით შეგროვებულ 117 სურათზე. ისინი ირჩევენ არეს, პერიმეტრს და სისხლის მიმოქცევის პარამეტრს სისხლის წითელი უჯრედების იდენტიფიკაციისათვის. გამოსახულების გაუმჯობესება ასევე ხორციელდება როგორც წინასწარი დამუშავების ეტაპი წყალგამყოფი ტრანსფორმაციის ალგორითმით [23]. ნორმობლასტური უჯრედები ავტომატურად გამოვლინდა დას და სხვების მიერ. [24] 950 ბირთვიანი სისხლის უჯრედებზე ექსპერიმენტების ჩატარებით. მარკერით კონტროლირებადი წყალგამყოფი ალგორითმი გამოიყენებოდა სისხლის წითელი უჯრედების სეგმენტაციისათვის. საშუალო ინტენსივობა, სტანდარტული გადახრა, გადახრა, კურტოზი და ენტროპიის მახასიათებლები ამოღებულია სისხლის წითელი უჯრედების სწორი და ეფექტური იდენტიფიკაციისათვის. შირაზი და სხვები. [25] სისხლის წითელი უჯრედების სეგმენტირება სტატისტიკურად დაფუძნებული ზღურბლის მეთოდის/გაურკვეველი c- საშუალებების გამოყენებით ერთ სისხლის უჯრედზე ALL-IDB მონაცემთა ნაკრებში. ტექსტურა და გეომეტრიული მახასიათებლები ამოღებულია სამიზნე უჯრედების გამოყოფისთვის. ფართობი, პერიმეტრი, სისხლის მიმოქცევის, ამოზნექილობის და სიმყარის პარამეტრები [26] ამოღებულია WBC– ების (ლიმფოციტები, ნეიტროფილები, ეოზინოფილები და ბაზოფილები) სეგმენტაციისათვის ავტორების მიერ შეგროვებული 117 სურათიდან.

3. მონაცემთა ნაკრების მომზადება

ჩვენ ვიყენებთ მწვავე ლიმფობლასტური ლეიკემიის სურათების მონაცემთა ბაზას (ALL-IDB1) [12], როგორც მონაცემთა ბაზა ჩვენი ექსპერიმენტული მუშაობისთვის. იგი შედგება სისხლის უჯრედების 108 მთლიანი სლაიდ სურათისგან. 108 სურათი შეიცავს 39000 სისხლის ელემენტს. ყველა სურათი გადაღებულია 300 -დან 500 -მდე გადიდების სიჩქარის მიკროსკოპით, რომელთაგან 59 (2592 × 1944) უჯრედი იყო ჯანმრთელი ადამიანებისგან და 49 (1712 × 1368) მწვავე ლიმფობლასტური ლეიკემიით (ALL) პაციენტებიდან.

ფიგურა 1 -ში, სურათები 1 (ა) –1 (გ) არის აღებული ჯანმრთელი ადამიანებისგან, ხოლო სურათი 1 (დ) –1 (ვ) სურათებიდან აღებულია მწვავე ლიმფობლასტური ლეიკემიით დაავადებული პაციენტებისგან.


გამოკითხვის მეთოდოლოგია

სტატიები იძებნება საკვანძო სიტყვების საშუალებით ერთ -ერთ პოპულარულ პლატფორმაზე, Google Scholar. პოპულარული გასაღები სიტყვაა სისხლის თეთრი უჯრედები, სისხლის წითელი უჯრედები, დაავადება, მანქანათმცოდნეობა, ღრმა სწავლა, სურათის დამუშავება და ახსნა.

ძიება სრულდება საკვანძო სიტყვების ხელახალი მოწყობით, რათა საძიებო სტატია სპეციფიკური იყოს ამ სფეროში. ნაშრომები განიხილება მხოლოდ ინგლისური ენიდან.

დიდი რაოდენობით სტატიების მიღების შემდეგ, მათი რეფერატი იკითხება, რათა დასრულდეს განხილვის პროცესში.

ზოგიერთი ნაშრომი დასრულებულია განსახილველად, რაც აღმოჩნდა, რომ მნიშვნელოვნად შეუწყო ხელი კვლევის საგანს.

ჯვარედინი ცნობები ასევე იძებნება ზოგიერთი ნაშრომის შესწავლით, რომელსაც აქვს კარგი კვლევითი წვლილი.

ქვემოთ მოყვანილი სურათი 1 გვიჩვენებს სხვადასხვა საკვანძო სიტყვების თანაარსებობას, რაც ითვალისწინებს 02 საკვანძო სიტყვას თითო სტატიაში, როგორც ზღურბლს. თანაარსებობა გაანალიზებულია VOSviewer 1.65-ით.

სურათი 1: საკვანძო სიტყვის თანაარსებობა.


4. დასკვნები

მთლიანი სისხლის შედედება გამოწვეული იყო სინათლის მიკროსკოპიით გამოსახულების გამო ერითროციტების გამჭვირვალეობის გამო. ამ ნაშრომში ჩვენ გავაუმჯობესეთ წყლის დაფუძნებული ოპტიკური გამწმენდი ხსნარი, რომელიც გამჭვირვალე გახდის მილიმეტრის მასშტაბის მთლიანი თაგვის ან ადამიანის სისხლის შედედებას, ხოლო შეინარჩუნებს შედედების ულტრასტრუქტურას. გასუფთავების უნარი გამოვლინდა ფლუორესცენტურად მარკირებული ერითროციტებისა და ფიბრინის გამოსახვით შედედების მთელ სიღრმეზე კონფოკალური და ორი ფოტონური მიკროსკოპის გამოყენებით. ამ ახალმა მეთოდმა საშუალება მისცა ერითროციტების დეფორმირებული ფორმების (პოლიედროციტების) შედედება სისხლის შედედებაში კონფოკალური მიკროსკოპის გამოყენებით, ასევე გამოავლინა მთელი ფიბრინის ქსელი და მისი ურთიერთქმედება ერითროციტებთან. ეს ტექნიკა საშუალებას იძლევა თრომბის შემადგენლობის რაოდენობრივი ანალიზი უჯრედულ დონეზე. ჩვენ აღმოვაჩინეთ, რომ ერითროციტების მოცულობა მნიშვნელოვნად არ იცვლება თრომბის შეკუმშვისას და იგივე რჩება სხვადასხვა სიღრმეზე. ეს მხარს უჭერს იმ აზრს, რომ თრომბის შეკუმშვა მიიღწევა ერითროციტების შეფუთვის ეფექტურობის გაზრდით და არა უჯრედების მოცულობის შემცირებით. გარდა ამისა, ჩვენ ვაჩვენეთ cCLOT– ის პოტენციური გამოყენება ფიბრინის ორგანიზაციისა და შედედების სტრუქტურაში წამლებთან დაკავშირებული ცვლილებების შესაფასებლად ფიბრინული აგრეგატების შეფასებით არა კუნთოვანი მიოსინ II ინჰიბიტორების, ბლებბისტატინის თანდასწრებით.


მიკროსკოპი

ჩვენი რედაქცია განიხილავს თქვენს მიერ წარდგენილს და განსაზღვრავს გადახედოს თუ არა სტატიას.

მიკროსკოპი, ინსტრუმენტი, რომელიც აწარმოებს მცირე ზომის საგნების გაფართოებულ სურათებს, რაც დამკვირვებელს საშუალებას აძლევს უაღრესად ახლო ხედვა ჰქონდეს მცირე ზომის სტრუქტურებს იმ მასშტაბით, რომელიც მოსახერხებელია გამოკვლევისა და ანალიზისათვის. მიუხედავად იმისა, რომ ამ სტატიის საგანია ოპტიკური მიკროსკოპები, გამოსახულება შეიძლება გაფართოვდეს მრავალი სხვა ტალღის ფორმით, მათ შორის აკუსტიკური, რენტგენული ან ელექტრონული სხივი, და მიღებული იყოს პირდაპირი ან ციფრული გამოსახულებით ან ამ მეთოდების კომბინაციით. მიკროსკოპმა შეიძლება უზრუნველყოს დინამიური გამოსახულება (როგორც ჩვეულებრივი ოპტიკური ინსტრუმენტების შემთხვევაში) ან სტატიკური (როგორც ჩვეულებრივი სკანირების ელექტრონული მიკროსკოპის შემთხვევაში).

რა არის მიკროსკოპი?

მიკროსკოპი არის ინსტრუმენტი, რომელიც ქმნის პატარა ობიექტის გაფართოებულ გამოსახულებას, რითაც ავლენს დეტალებს ძალიან მცირედ, რომ შეუიარაღებელი თვალით დაინახოს. ყველაზე ცნობილი მიკროსკოპი არის ოპტიკური მიკროსკოპი, რომელიც იყენებს ლინზების საშუალებით ფოკუსირებულ ხილულ სინათლეს.

რას ნიშნავს "მიკროსკოპი"?

სიტყვა "მიკროსკოპი" მომდინარეობს ლათინური სიტყვიდან "microscopium", რომელიც მომდინარეობს ბერძნული სიტყვებიდან "mikros", რაც ნიშნავს "პატარა" და "skopein", რაც ნიშნავს "შეხედვას".

ვინ გამოიგონა მიკროსკოპი?

საბოლოოდ არ არის ცნობილი ვინ გამოიგონა მიკროსკოპი. თუმცა, როგორც ჩანს, ყველაზე ადრეული მიკროსკოპები გააკეთეს ჰოლანდიელმა ოპტიკოსებმა ჰანს იანსენმა და მისმა ვაჟმა ზაქარია იანსენმა და ჰოლანდიელმა ინსტრუმენტების შემქმნელმა ჰანს ლიპერშემ (რომელმაც ასევე გამოიგონა ტელესკოპი) დაახლოებით 1590 წელს.

რა არის მიკროსკოპის სლაიდები?

მიკროსკოპის სლაიდები არის გამჭვირვალე შუშის ან პლასტმასის პატარა ოთხკუთხედები, რომლებზეც ნიმუში შეიძლება დაისვენოს, რათა მისი გამოკვლევა მოხდეს მიკროსკოპის ქვეშ.

მიკროსკოპის გამადიდებელი ძალა არის გამოხატულება იმ რაოდენობის რამდენჯერმე საგნის შესწავლა ჩანს გადიდებული და განზომილებიანი თანაფარდობაა. ის ჩვეულებრივ გამოხატულია სახით 10 × (10-ჯერ გადიდებული გამოსახულებისთვის), ზოგჯერ არასწორად ნათქვამია როგორც „ათი ექს“-თითქოს × ალგებრული სიმბოლო იყო-ვიდრე სწორი ფორმა, „ათჯერ“. მიკროსკოპის გარჩევადობა არის ობიექტის უმცირესი დეტალის ზომა, რომლის დაკვირვებაც შესაძლებელია. რეზოლუცია გამოხატულია წრფივი ერთეულებით, ჩვეულებრივ მიკრომეტრით (μm).

მიკროსკოპის ყველაზე ნაცნობი ტიპია ოპტიკური ან მსუბუქი მიკროსკოპი, რომელშიც შუშის ლინზები გამოიყენება გამოსახულების შესაქმნელად. ოპტიკური მიკროსკოპი შეიძლება იყოს მარტივი, რომელიც შედგება ერთი ლინზისგან, ან ნაერთისგან, რომელიც შედგება რამდენიმე ოპტიკური კომპონენტისგან. ხელის გამადიდებელ შუშას შეუძლია გაზარდოს დაახლოებით 3 -დან 20 მდე. ერთი ლინზის მქონე უბრალო მიკროსკოპს შეუძლია გაზარდოს 300 ×-მდე და შეუძლია ბაქტერიების გამოვლენა-ხოლო რთული მიკროსკოპები შეიძლება გაიზარდოს 2 000 ×-მდე. უბრალო მიკროსკოპს შეუძლია გადააჭარბოს 1 მიკრომეტრზე დაბლა (μm მემილიონედი მეტრი), რთული მიკროსკოპი შეიძლება გადაწყდეს დაახლოებით 0.2 μm- მდე.

საინტერესო სურათების გადაღება შესაძლებელია ფოტოგრაფიით მიკროსკოპის საშუალებით, ტექნიკა, რომელიც ცნობილია როგორც ფოტომიკროგრაფია. მე -19 საუკუნიდან ეს კეთდებოდა ფილმით, მაგრამ მის ნაცვლად ახლა ფართოდ გამოიყენება ციფრული გამოსახულება. ზოგიერთ ციფრულ მიკროსკოპს აქვს სათვალე და გამოსახულებებს უშუალოდ კომპიუტერის ეკრანზე იძლევა. ამან განაპირობა დაბალი ფასიანი ციფრული მიკროსკოპების ახალი სერია, გამოსახულების ფართო სპექტრით, მათ შორის დროითი ვადის გასვლის მიკროგრაფიით, რომელმაც ადრე რთული და ძვირადღირებული ამოცანები მიუტანა ახალგაზრდა ან მოყვარულ მიკროსკოპისტს.

სხვა სახის მიკროსკოპები იყენებენ სხვადასხვა ფიზიკური პროცესების ტალღურ ბუნებას. ყველაზე მნიშვნელოვანია ელექტრონული მიკროსკოპი, რომელიც იყენებს ელექტრონების სხივს გამოსახულების წარმოქმნაში. გადამცემი ელექტრონული მიკროსკოპი (TEM) გააჩნია გამადიდებელი ძალა 1 000 000 × ზე მეტი. TEM– ები ქმნიან თხელი ნიმუშების სურათებს, როგორც წესი, მონაკვეთებს, ახლო ვაკუუმში. სკანირების ელექტრონული მიკროსკოპი (SEM), რომელიც ქმნის რელიეფის ასახულ გამოსახულებას კონტურულ ნიმუშში, ჩვეულებრივ აქვს უფრო დაბალი გარჩევადობა ვიდრე TEM, მაგრამ შეუძლია აჩვენოს მყარი ზედაპირები ისე, როგორც ჩვეულებრივი ელექტრონული მიკროსკოპი არ შეუძლია. ასევე არსებობს მიკროსკოპები, რომლებიც იყენებენ ლაზერებს, ბგერას ან რენტგენის სხივებს. სკანირების გვირაბის მიკროსკოპი (STM), რომელსაც შეუძლია შექმნას ატომების გამოსახულებები და გარემოს სკანირების ელექტრონული მიკროსკოპი (ESEM), რომელიც წარმოქმნის სურათებს აირისებრი გარემოს ნიმუშების ელექტრონების გამოყენებით, იყენებს სხვა ფიზიკურ ეფექტებს, რაც კიდევ უფრო აფართოებს ობიექტების ტიპებს იყოს გამოკვლეული


რთული მიკროსკოპი: საფუძვლები, ფუნქციონირება და გამოყენება

რთული მიკროსკოპი არის ოპტიკური მიკროსკოპი, რომელიც იყენებს სინათლეს და სხვადასხვა ლინზებს ობიექტის გაზვიადების ან გასადიდებლად. რთული მიკროსკოპის, მისი საფუძვლებისა და სხვადასხვა სფეროში გამოყენების შესახებ მეტი ინფორმაციის მისაღებად, წაიკითხეთ.

რთული მიკროსკოპი არის ოპტიკური მიკროსკოპი, რომელიც იყენებს სინათლეს და სხვადასხვა ლინზებს ობიექტის გაზვიადების ან გასადიდებლად. რთული მიკროსკოპის, მისი საფუძვლებისა და სხვადასხვა სფეროში გამოყენების შესახებ მეტი ინფორმაციისათვის, წაიკითხეთ …

Იცოდი?

რთული მიკროსკოპის გამოყენებით, გამოსახულების გადიდება შესაძლებელია 2000 -ჯერ დიდი, ვიდრე შეუიარაღებელი თვალით ჩანს.

დღემდე არსებულ მრავალრიცხოვან გამოგონებებს შორის, მიკროსკოპი მართლაც იყო ერთ -ერთი ყველაზე გამორჩეული და მნიშვნელოვანი. ელემენტები, რომლებიც ძალიან მცირეა შეუიარაღებელი თვალით დანახვისთვის, აშკარად ჩანს უკიდურესად მარტივად და დეტალურად მიკროსკოპის გამო.

ტერმინი მიკროსკოპი შეიძლება დაიყოს ორ ცალკეულ სიტყვად, ‘micro ’ და ‘scope ’, სადაც ტერმინი ‘micro ’ ნიშნავს პატარა ან პაწაწინა , და ‘scope ’ ნიშნავს სანახავად ან დაკვირვება რა მაშასადამე, მიკროსკოპი შეიძლება გავიგოთ, როგორც ინსტრუმენტი პატარა ელემენტების დასაკვირვებლად.

რა არის რთული მიკროსკოპი?

სიტყვა ნაერთი ნიშნავს მრავალჯერ, შერევას ან ორივეს კომბინაციას. რთული მიკროსკოპი არის მიკროსკოპი, რომელსაც იყენებს ერთზე მეტი ობიექტივი. ლინზების კომბინაციის სისტემით შემუშავებული რთული მიკროსკოპი შედგება ორი ოპტიკური ნაწილისგან, კერძოდ ობიექტური ლინზებისა და თვალის ლინზებისგან. ობიექტივი იყენებს მოკლე ფოკუსურ სიგრძეს სურათის გასადიდებლად. ამიტომ ცხოველთა უჯრედები, მცენარეული უჯრედები, პროტოზოები, ბაქტერიები ადვილად შესამჩნევი და შესწავლილია რთული მიკროსკოპის დახმარებით.

რთული მიკროსკოპი შეიძლება დაიყოს თავდაყირა და ინვერსიულ მიკროსკოპად. თავდაყირა მიკროსკოპი იგივეა, რაც ჩვეულებრივი მიკროსკოპი ლინზების სისტემით, რასაც მოჰყვება ეტაპი, სადაც ინახება ეგზემპლარი და შემდეგ სინათლის წყარო. ინვერსიული მიკროსკოპი, როგორც სახელი გვთავაზობს, თავდაყირა დგას. ეს არის ზუსტად შებრუნებული მიკროსკოპის საპირისპირო ასლი განათების სისტემით ჯერ, რასაც მოჰყვება ეტაპი და შემდეგ ლინზების სისტემა.

რთული მიკროსკოპი შეიძლება გამოყენებულ იქნას სხვადასხვა მიზნით, როგორიცაა სამედიცინო კვლევა და განათლება. ამასთან, აუცილებელია იცოდეთ რთული მიკროსკოპის საფუძვლები და დაიმახსოვროთ ისინი გამოყენებისას.

რთული მიკროსკოპის ნაწილები

რთული მიკროსკოპი შედგება ობიექტური ობიექტივისგან, სათვალისაგან, სტადიისაგან, რომელზედაც მოთავსებულია ეგზემპლარი და რეგულირების ღილაკები. იგი ასევე შეიცავს სინათლის წყაროს და სარკეს, ცხვირის ნაწილს და მკლავს. შემდეგი დიაგრამა დაგეხმარებათ უკეთ გაიგოთ მიკროსკოპი.

რთული მიკროსკოპის საფუძვლები

რთული მიკროსკოპის საფუძვლების სწავლა, რათა ყოველ ჯერზე მასთან დაკავშირება, ხელსაყრელი იქნებოდა. ქვემოთ მოცემულია რამდენიმე მნიშვნელოვანი პუნქტი, რომელიც საფუძვლიანად უნდა იქნას გაგებული.

Every თითოეული მიკროსკოპის ფუნქციონირებისთვის საჭიროა იყოს სინათლის წყარო რაც ხელს შეუწყობს იმ ობიექტის განათებას, რომელიც უნდა ნახოთ.

Of სინათლის წყარო შეიძლება იყოს სარკე, რომელიც ასახავს შუქს გარედან, ან მოწყობილობას შეიძლება ჰქონდეს თავისი საკუთარი სინათლის წყარო.

❒ ქვედა ლინზას, რომელიც არის ნიმუშთან ყველაზე ახლოს არსებული ობიექტივი, ეწოდება ობიექტური ობიექტივი. ასევე ცნობილია, როგორც პირველადი ობიექტივი, ის ადიდებს ნიმუშს. შეიძლება არსებობდეს ობიექტური ლინზები, რომელთა სიმძლავრეც განსხვავდება. გადიდების მნიშვნელობები შეიძლება განსხვავდებოდეს 5x– დან 100x– მდე. მნიშვნელობები იწერება ლინზის მხარეს.

❒ ობიექტივი ყველაზე ახლოს თვალთან მაყურებლის, ეს არის ზედა ლინზა, ეწოდება თვალის ლინზას. ასევე ცნობილია როგორც მეორადი ობიექტივი, ზედა ლინზის გამადიდებელი ძალა შეიძლება იყოს 2x– დან 20x– მდე.

❒ ობიექტის ობიექტივი უნდა იყოს პარალელურად თვალთვალისკენ. ობიექტივის დაყენება შესაძლებელია ცხვირის ნაწილის ბრუნვით, ასევე ცნობილი როგორც კოშკი. A ‘ დაწკაპუნების ’ ბგერაში ნათქვამია, რომ ორივე ობიექტის ობიექტივი და თვალის ობიექტი განთავსებულია სწორ ადგილას.

The თვალის ლინზების გადიდება ობიექტური ლინზების გადიდებით იწვევს მთლიანი გადიდებას, ანუ ნიმუშის გაფართოებულ სურათს.

❒ ამრიგად, 10x თვალის ლინზა 30x ობიექტთან ერთად, გამოიწვევს 300x გადიდების ფაქტორს. ეს ნიშნავს, რომ ეგზემპლარი 300 -ჯერ უფრო დიდი იქნება, ვიდრე შეუიარაღებელი თვალით ჩანს.

თუმცა, ნაერთ მიკროსკოპს შეუძლია ელემენტების გადიდება a- მდე მაქსიმუმ 2000x მხოლოდ მნიშვნელოვანია აღინიშნოს, რომ 2000x- ზე დიდი ნებისმიერი სურათი არც თვალით იქნება აღიარებული და არც ტვინი შეძლებს გამოსახულების დამუშავებას.

Different იმისათვის, რომ ნიმუში სხვადასხვა ზომის გადიდოთ, ობიექტის ობიექტივი გადაატრიალეთ თვალის ნაცვლად.

❒ არასოდეს შეეხოთ ლინზის ზედაპირს თქვენი ხელებით, რადგან ამან შეიძლება ობიექტივი დაბინდოს. მას ასევე შეუძლია ნაკაწრების აღრიცხვა, რითაც ამცირებს მაყურებლის მიერ ნიმუშის ხილვადობას.

❒ დაიმახსოვრეთ, რომ დაიჭიროთ ხელი და მიკროსკოპის ფუძე ერთდროულად, რადგან რთული მიკროსკოპი უფრო მძიმე და დიდი ზომისაა. ისინი ასევე უფრო ძვირია სხვა მიკროსკოპებთან შედარებით.

რთული მიკროსკოპის გამოყენება

მეცნიერებისა და ტექნოლოგიების ამ ახალ ხანაში, მიკროსკოპი დიდი სიკეთე იყო მსოფლიოსთვის. ახლა განვიხილოთ რთული მიკროსკოპის გარკვეული გამოყენება.

▣ ტარდება სისხლის ანალიზი, რომელიც უზარმაზარ დახმარებას უწევს დაავადებების დიაგნოსტირებას. ამრიგად, რთული მიკროსკოპი დიდი გამოყენებაა პათოლოგიის ლაბორატორიებში, რათა დადგინდეს დაავადებები.

Crime დანაშაულის სხვადასხვა შემთხვევები გამოვლენილია და წყდება ადამიანის უჯრედების ამოღებით და სასამართლო ლაბორატორიებში მიკროსკოპის ქვეშ შესწავლით. მინერალების არსებობა ან არარსებობა შეიძლება განისაზღვროს და ლითონების არსებობა გამოვლინდეს, რითაც ხელს შეუწყობს დანაშაულთა გადაწყვეტას.

▣ სასამართლო ექსპერტებსა და მეცნიერებს ასევე შეუძლიათ გაარკვიონ ის ქვეყანა, საიდანაც მოვიდა კონკრეტული ნარკოტიკი მისი ნაწილაკების შეხედულებისამებრ რთული მიკროსკოპის ქვეშ.

Schools სკოლებისა და კოლეჯების მოსწავლეები სარგებლობენ მიკროსკოპის გამოყენებით მათი აკადემიური ექსპერიმენტების ჩასატარებლად. ეს არის უზარმაზარი დახმარება, რადგან სტუდენტებს შეუძლიათ დაინახონ ბაქტერიები და ვირუსები, რაც სხვაგვარად შეუიარაღებელი თვალით უხილავია. ამით ისინი მოწმეები ხდებიან ისეთი რამ, რაც თეორიულად შეისწავლეს.

▣ მცენარეთა უჯრედები იკვლევენ და მასზე აყვავებული მიკროორგანიზმების დადგენა შესაძლებელია რთული მიკროსკოპის დახმარებით. ამრიგად, რთული მიკროსკოპი სასარგებლო აღმოჩნდა ბიოლოგებისთვისაც.

ზაქარია იანსენი გამოიგონა პირველი რთული მიკროსკოპი 1590 წელს და მოგვიანებით გალილეო გალილეი, დიდი იტალიელი ფიზიკოსი გამოვიდა თავისი თვითნაკეთი ვერსიით. ანტონ ვან ლევენჰოკი, მიკროსკოპის მამა, მიეკუთვნება მიკროსკოპის დიზაინისა და გამოყენების სფეროში მიღწეულ მუდმივ პროგრესს.

მას შემდეგ რაც შეიწოვეთ რთული მიკროსკოპის მნიშვნელობა, საფუძვლები და გამოყენება, თქვენ უკვე შეძლებთ ინსტრუმენტთან იდენტიფიცირებას გამოყენებისას. უკეთესად გასაგებად, ყოველთვის მიიღეთ ექსპერტის დახმარება მეცნიერების სფეროში. ვიმედოვნებ, რომ სტატიამ მოგაწოდა ნათელი სურათი რთული მიკროსკოპის შესახებ.

დაკავშირებული პოსტები

წაიკითხეთ შემდეგი სტატია, რათა მიიღოთ მეტი ინფორმაცია გალვანზირებული ფოლადისა და მისი სხვადასხვა დანიშნულების შესახებ.

რა არის ჟანგბადის ანალიზატორი? ეს სტატია გეტყვით მის მახასიათებლებსა და გამოყენებებზე. Გადახედე. ჟანგბადის ანალიზატორი არის მოწყობილობა, რომელიც ზომავს ჟანგბადის დონეს


სისხლის ნაცხი: მომზადების მეთოდი და პრინციპი | სისხლი | ბიოლოგია

კარგად მომზადებული ნაცხი აუცილებელია სისხლის მიკროსკოპული გამოკვლევისთვის. სისხლის ნაცხი გამოიყენება ლეიკოციტების დიფერენციალების დასადგენად, ერითროციტების, თრომბოციტებისა და ლეიკოციტების მორფოლოგიის შესაფასებლად და, საჭიროების შემთხვევაში, თრომბოციტებისა და ლეიკოციტების რაოდენობის შესაფასებლად.

სისხლის ნაცხის სასურველი თვისებები მოიცავს:

მე. საკმარისი კითხვის არე

ii მისაღები მორფოლოგია სამუშაო ზონაში

iii ლეიკოციტების თანაბარი განაწილება

კლინიკური პათოლოგიის ლაბორატორია იყენებს ნაცხის ტექნიკას სისხლის ნაცხის მოსამზადებლად. ეს მეთოდი იწვევს სისხლის სისქის თანდათანობით შემცირებას სქელიდან თხელი ბოლოებამდე, ნაცხის დამთავრებული ბუმბულიან კიდეზე დაახლოებით 2 მმ სიგრძის.

ნაცხი აღემატება 25 მმ სიგრძეს და ბუმბულიანი კიდე ჩერდება სლაიდის ბოლოდან დაახლოებით 10 მმ. სისხლის ფილმი იკავებს სლაიდის ცენტრალურ ნაწილს და აქვს გარკვეული მინდვრები ყველა მხრიდან, რომელთა შესწავლაც შესაძლებელია ზეთის ჩაძირვით.

ფილმის თხელი ბოლო თანდათან უფრო თხელი ხდება და არ აქვს მარცვლოვანი ზოლები, ღარები, ქედები, ტალღები ან ხვრელები და#8211 მახასიათებლები, რამაც შეიძლება გამოიწვიოს ლეიკოციტების არათანაბარი განაწილება. ნორმალური პაციენტების პრეპარატებში, ნაცხის თხელი ნაწილი იკავებს მთლიანი ფართობის დაახლოებით 1/3 და, ამ არეალში, ერითროციტები განაწილებულია მონოლეიაში.

The thickness of the spread is influenced by the angle of spreader slide (the greater the angle, the thicker and shorter the blood smear), the size of the drop of blood and the speed of spreading. Glass cover slips are mounted on all blood smears to prevent damage to smear during examination, cleaning, handling and storage.

Preparation of Blood Smear:

2. E.D.T.A. blood (within 1 hr. of collection)

Preparation of Blood Film:

The slide should be clean. Place a small drop of blood, or one side about 1-2 cm from one end. Without delay place a spreader at an angle of 45° from the slide and move it back to make contact with the drop. The drop should spread out quickly along the line of contact of spreader with the slide.

The moment this occurs, spread the film by rapid smooth forward movement of the spreader. The film should be 3-4 cm in length. The ideal thickness is such that there is some overlap of R.B.C. throughout most of its length with proper separation and lack of distortion of RBC’s. the end from where the spread had ended is called tail end.

The ideal zone to examine the blood film is the areas between tail and body. If the film is made too thin or if a rough edged spread is used many leucocytes accumulate in edges and at tail. DLC should not be attempt on such a slide.

Characteristics of an Ideal Blood Smear:

1. It should be in the central 2/3 of slide.

2. It should have straight lateral border and short tongue shaped tail.

Precautions to be taken during preparation:

1. Angle should be maintained at 45°.

2. Blood drop should be of proper size.

3. Spreader’s edges should be smooth and it should be smaller than the slide on which smear is being made.

4. Pressure applied should be proper.

5. Drop should be pulled with spreader not pushed with it.

6. Preparation should be in one single stroke.

Staining of Blood Film:

Process of Staining:

The slide is covered with leishman stain for 2 mins. This much time is required for fixation. After 2 mins it is diluted with double the volume of buffer water. On adding buffer water a metallic shin will be formed, if the stain is dry. Allow this to stand for 15 min. after min, flood the slide with water to remove stain. Then wash under tap water wiping the back of slide with finger or cotton. Dry in air.

Precautions Suring Staining:

1. Time: Initial time 2 minutes, is important. After dilution increase of 1-2 minutes, does not alter staining.

2. Never let the stain dry on the slide otherwise stain deposits will make it impossible to count leucocytes (DLC).

3. Staining should be deposit free.

4. For washing the smear – let the water stream replace the stain. Don not throws the stain first.

Technique of Differential Leucocyte Counting:

D.L.C. is done is oil immersion, with wide open diaphragm and high up condenser. D.L.C. is best done in area where RBC morphology is good. There tends to be somewhat unequal distribution of WBC is normal blood film.

The smaller cells (like small lymphocytes) being in greater relative number in central thicker portions and the larger cells (monocytes eosinophils) being in greater relative number- along the edges and the tail. So the D.L.C. on a smear depends upon the area of the slide used for counting. To overcome this difficulty both area are included in counting.

Two methods are employed in counting:

1. Going back and forth lengthwise including both body and tail.

2. Going back and forth sidewise including both edges and centre. Usually 100 cells are counted.

It is used for malaria and microfilaria.

Sample is taken at or just after height of fever with shivering.

Sample is collected at midnight. Drop of blood is taken on slide which is spread evenly, air dried and then de-hemoglobinised by placing film in distilled water for 5-10 min. Leishman’s stain is mostly used for malaria.

A buffy coat preparation facilitates the search for immature and abnormal white blood cells, particularly when the peripheral blood count is low, and in identification of bacteria or yeast in septic and immune-compromised or immunosuppressed patients.

Micro-hematocrit centrifugation of specimen. Concentration of WBC’s Wright-Giemsa Stain.

Specimen Requirements: Collect:

Routine venipuncture, EDTA (Lavender-top tube)

Stable at Room Temperature for 24 hours.

Stable Refrigerated for 36 hours.

Clotted, QNS, old specimen, identification errors, labeling errors, inappropriate anticoagulants


Making Microscope Slides Yourself

There are three types of mounts that you can choose from when making microscopy slides. These are dry mount, wet mount, and prepared mount. Each mount has its own pluses and minuses. Your personal skill level and available equipment will determine how easy it is to make each type.

How to Make Dry Mount Microscope Slides

ინსტრუქცია:

Dry mounts are the easiest microscope slides to make. You will need a glass slide and a cover slip. Dry mounts work best for samples like pollen, hair, feathers, or even dust particles caught in a microfilm filter.

The basic steps to prepare your own dry mount slide are very simple. Place the sample on the slide and cover. That's it! The cover will work to protect both your sample and objective lenses.

ნაკლოვანებები:

Although making microscope slides in the dry mount is easy, there are some disadvantages. These mounts are temporary unless you seal the cover slip in some way. It is also harder to see the more intricate structures of some species. For that, you will have to learn how to make a prepared mount.

How to Make Wet Mount Microscope Slides

ინსტრუქცია:

Making microscope slides in a wet mount has a lot of advantages. The liquid refraction makes it much easier to see intricate structures. If the specimen is alive, the liquid will make it possible to view both the natural color and mobility patterns.

To make a wet mount, place a few drops of your desired liquid on the slide. Add the specimen to your liquid, and then place a few more drops on top of it. This ensures that the specimen will be covered in the liquid. If you are looking at an aquatic specimen like algae, use the water in which the specimen is residing.

Next apply the cover slip. This is done very gently in order to avoid the formation of air bubbles. Slowly lower the cover down at an angle, and it will eventually be held in place by surface tension. If the cover slip is floating on the bottom half of the slide, you have used too much liquid.

There are a variety of liquids that are acceptable for making a wet mount, from tap water to glycerin. The important thing to consider is your type of specimen. Some specimens don’t do well when faced with particular liquids. Be sure to choose your liquid carefully to match your specimen.

ნაკლოვანებები:

Wet mounts have disadvantages as well. Finding a moving specimen can be a problem. The slides also tend to dry out under the light of the microscope. If your wet mounts are drying out before you are ready, apply an additional drop of liquid under the cover slip.

How to Make Prepared Mount Microscope Slides

ინსტრუქცია:

Making prepared mount slides is more involved, although the advantage is that once you are done you can keep them for a long time.

First your specimen needs to be sliced very thin. The best tool for this is a microtome, an instrument used to cut materials into featherweight slices.

Once the specimen is thin enough, place it on your slide. You will have to remove any excess water. Depending on the specimen you can air dry, blot, or use a heat source to dry the sample.

You will want to add a dye like methylene blue in order to stain the intricate structures of the specimen. You can do add a drop of the dye to the sample, then place the cover on top. Adding a fixative to the specimen before you put on the cover slip will help prevent decay.

The specimen to the right, a piece of a mouse quadriceps, is stained with Hematoxylin. Note how clearly you can see the tiny structures, which are individual muscle fibers.

If you have a specimen that is in a wet mount, there is a really simple way to stain it. Place a drop of dye on the edge of the cover slip. Put a small piece of paper towel at the opposite edge. As the paper towel absorbs the liquid, the dye should be pulled under the cover and across the specimen.

The prepared mount method is more complex, so it's not often done by the hobby microscopist. These slides are for biological or pathological research.

Making Microscope Slides: Conclusion

Never fear though, if you want to examine more complex structures but don't have the time/knowledge to prepare your own specimens you can always shop prepared slides at Amazon.

With a little practice, making microscope slides isn’t all that difficult. You may even enjoy it when you master some of the techniques. Once you know the steps needed, nothing can stand in the way of your own curiosity!


Უყურე ვიდეოს: ლუპა მიკროსკოპი ტელესკოპი (იანვარი 2022).